Optimasi Konsentrasi Kinetin dan Benzyl Amino Purine Pada Kultur Tunas Vanili (Vanilla planifolia)

Authors

DOI:

https://doi.org/10.25047/jii.v21i1.2636

Keywords:

kultur, multiplikasi, tunas, vanili

Abstract

Vanili berpotensi untuk dikembangkan melalui teknik kultur jaringan untuk mengantisipasi keterbatasan tanaman induk sebagai sumber bahan tanam. Kemampuan perbanyakan tunas vanili secara in vitro perlu dikendalikan dengan pengaturan Kinetin dan Benzil Amino Purin. Kepentingan penelitian ini adalah 1) analisis respon eksplan vanili pada beberapa konsentrasi Kinetin; 2) analisis respon eksplan vanili pada beberapa konsentrasi BAP dan 3) analisis interaksi Kinetin dan BAP terhadap respon eksplan vanili terhadap perbanyakan tunas. Penelitian dilaksanakan di Laboratorium Kultur Jaringan Politeknik Negeri Jember pada bulan Juni sampai Desember 2020 dengan menggunakan Rancangan Acak Lengkap (RAL) faktorial. Faktor 1 adalah konsentrasi Kinetin 0,0, 1,0, 2,0 mg.L-1 dan faktor kedua adalah konsentrasi BAP 0,5, 1,5, 2,5 mg.L-1. Hasil penelitian membuktikan bahwa perbanyakan tunas paling cepat terjadi pada media MS + Kinetin 2 mg.L-1 dengan rerata 8,7 hari setelah inokulasi. Rerata jumlah pucuk 7,6 pucuk/eksplan dengan berat basah rata-rata tertinggi 0,9 gram/eksplan pada penambahan BAP 1,5 mg. L-1 pada pengukuran 70 hari setelah inokulasi.

Downloads

Download data is not yet available.

Author Biographies

Dyah Nuning Erawati, Politeknik Negeri Jember

Jurusan Produksi Pertanian

Siti Humaida, Politeknik Negeri Jember

Jurusan Produksi Pertanian

Irma Wardati, Politeknik Negeri Jember

Jurusan Produksi Pertanian

References

Santi, F S. Ingin Mengembangkan Vanili? Gunakan Benih Unggul Dari Kebun Sumber Benih Vanili (Vanilla planifolia) Di Indonesia. Direktorat Perbenihan, Direktorat Jenderal Perkebunan Kementrian Pertanian. 2021. http://ditjenbun.pertanian.go.id/

B C Tan, C F Chin and P Alderson. Optimisation of plantlet regeneration from leaf and nodal derived callus of Vanilla planifolia Andrews. Plant Cell Tiss Organ Cult (2011) 105:457–463. DOI 10.1007/s11240-010-9866-6

A M Njoroge, Gitonga L, Mumuta E, L Mimano, Macharia C, Wasilwa L, Muli S, Kiuru P and Mungai A. Propagation of High Quality Planting Materials of Vanilla (Vanilla planifolia) Through Tissue Culture. 2015. https://www.researchgate.net/publication/265948017

A G Pinaria. Liew, ECY and Burgess, LW. Fusarium species associated with vanilla stem rot in Indonesia, Australasian Plant Pathology (2010) 39:176–183.

S Gantait and S. Kundu. In vitro biotechnological approaches on Vanilla planifolia Andrews: advancements and opportunities. Acta Physiol Plant (2017) 39:196. DOI 10.1007/s11738-017-2462-1

V M Salazar-Rojas, Herrera-Cabrera, BE. Delgado-Alvarado, A. Soto-Herna´ndez, M. Castillo-Gonza´lez, F and Cobos-Peralta, M. Chemotypical variation in Vanilla planifolia Jack. (Orchidaceae) from the Puebla-Veracruz Totonacapan region. Genet Resour Crop Evol. 2011. DOI 10.1007/s10722-011-9729-y

A Ramos-Castellá. Iglesias-Andreu, LA. Bello-Bello, J and Lee-Espinosa, H. Improved propagation of vanilla (Vanilla planifolia Jacks. Ex Andrews) using a temporary immersion system. In Vitro Cell.Dev.Biol.—Plant (2014) 50:576–581. DOI 10.1007/s11627-014-9602-8.

G Renuga and S. K. S. N, “Induction of vanillin related compounds from nodal explants of Vanilla planifolia using BAP and Kinetin,” Asian Journal of Plant Science and Research, 2014, 4(1):53-61.

D N Erawati, I Wardati, S Humaida and U Fisdiana. Micropropagation of Vanilla (Vanilla planifolia Andrews) with Modification of Cytokinins. IOP Conf. Series: Earth and Environmental Science 411 (2020) 012009. IOP Publishing. doi:10.1088/1755-1315/411/1/012009

N Jadid, T Nurhidayati and Priyono. In Vitro Clonal Propagation of Vanilla planifolia Andrews Using Microshoot-derived Node Explants. J. Appl. Environ. Biol. Sci., 5(6)105-110, 2015.

K Karyanti. Pengaruh Beberapa Jenis Sitokinin Pada Multiplikasi Tunas Anggrek Vanda douglas Secara In Vitro. Jurnal Bioteknologi & Biosains Indonesia 4(1):36–43. 2017

D N Erawati, U Fisdiana dan M Kadafi. The response of Vanilla Explant (Vanilla planifolia) to BAP and NAA Stimulation through Micropropagation Technique. Agriprima Journal of Applied Agricultural Sciences, 4(2):146-153.2020. https://doi.org/10.25047/agriprima.v4i2.362.

I Mushimiyimana, T Asiimwe, C Dusabe, F Gatunzi, J Ndahimana, V Ahishakiye, J Kahia and D Gahakwa. In Vitro Propagation of Vanilla in Rwanda. Rwanda Journal, Volume 24 Series E 2011: Agricultural Sciences. 67-74.

E G Lestari. Peranan Zat Pengatur Tumbuh dalam Perbanyakan Tanaman melalui Kultur Jaringan. Jurnal AgroBiogen 7(1):63-68. 2011

Published

2021-04-30

How to Cite

Erawati, D. N., Mawaddah, Y., Humaida, S., & Wardati, I. (2021). Optimasi Konsentrasi Kinetin dan Benzyl Amino Purine Pada Kultur Tunas Vanili (Vanilla planifolia). Jurnal Ilmiah Inovasi, 21(1), 54–57. https://doi.org/10.25047/jii.v21i1.2636

Issue

Section

Article

Similar Articles

1 2 > >> 

You may also start an advanced similarity search for this article.